水中的细菌数量及大肠菌群数的检验

为检验饮用水是否达到卫生标准，需要进行水中的细菌数量及大肠菌群数的测定。细菌总数可以说明水质被污染的程度，一般来说，细菌数量越多，污染的程度越高。大肠菌群是大量出现在粪便中的非致病菌，从其数量的多少可判断水源被人畜排泄物污染的程度，所以大肠可作为粪便污染的指示菌。国家饮用水标准规定，饮用水中大肠菌群数不超过3CFU/L，细菌总数不超过100CFU/mL。2005年6月开始，城市供水卫生标准有所提高，自来水中细菌菌落数不得超过80CFU/mL，任意取100mL水样不得检出大肠。因此，对水中的细菌数量及大肠菌群数的检验是保证饮用水安全和控制传ran病的有效手段，同时也是评价水质状况的重要指标。

大肠传播途径肠

大肠传播途径

肠大肠是一种人畜共患病。凡是体内有肠大肠的、带菌者和家畜、家禽等都可传播本病。动物作为源的作用尤其重要，较常见的可传播本病的动物有牛、鸡、羊、狗、猪等，也有从鹅、马、鹿、白鸽的粪便中分离出O157H7大肠的报道。其中以牛的带菌率，可达16%，而且牛一旦这种细菌，排菌时间至少为一年。

可通过饮用受污染的水或进食未熟透的食物(特别是免治牛肉、汉堡扒及烤牛肉)而。饮用或进食未经消毒的奶类、芝士、蔬菜、果汁及乳酪而染病的个案亦有发现。此外，若个人卫生欠佳，亦可能会通过人传人的途径，或经进食受粪便污染的食物而该种病菌。

患病或带菌动物往往是动物来源食品污染的根源。如牛肉、奶制品的污染大多来自带菌牛。带菌鸡所产的鸡蛋、鸡肉制品也可造成传播。带菌动物在其活动范围内也可通过排泄的粪便污染当地的食物、草场、水源或其他水体及场所，造成交叉污染和，危害极大。

大肠菌群的MPI计数检验方法

大肠菌群的MPI计数

检验方法

选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液)，每个稀释度接种3管MUGal肉汤管，每管接种1mL(如接种量超过1mL，则用双料MUGal肉汤管)，同时另取2支MUGal肉汤管(或双料MUGal肉汤管)加入与样品稀释液等量的上述无菌磷酸盐缓冲液(或生理盐水)作空白对照。将接种后的培养管置干37+1℃培养箱培养18h-24h。将培养管置干暗处，用波长366nm的紫外光灯照射，如显蓝色荧光，为大肠菌群阳性管;如未显蓝色荧光，则为大肠菌群阴性管。培养基检验原理:胰蛋白胨提供碳源和氮源满足细菌生长的需求;氯化钠可维持均衡的渗透压;磷酸二氯钾和磷酸氦二钾是培养基pH缓冲剂:月桂基硫酸钠可以抑制革兰氏阳性菌的生长;大肠菌群可产生一半乳糖苷酶，分解液体培养基中的酶底物4--B-D-半乳糖苷MUGal，使4-游离，在波长366nm紫外灯照射下呈现蓝色荧光。

培养基用法:称取本品307克，加热搅拌溶解于1000mL蒸馏水中，分装于20mmx150mm试管中，每管9mL，116℃高乐灭菌10分钟，待培养基冷却后，以无菌操作干每管培养液内加入01mL经无菌水稀释的500ug/mL磺啶液，备用。

发酵法检测食品中大肠群的一种比较传统的方法

不同方法其检测原理和检测手段的不同，都会影响检测的灵敏度、准确性和快速性。

发酵法

　　发酵法是检测食品中大肠群的一种比较传统的方法，这种技术已经得到的普遍认可。具有代表性的是美国环保局（EPA）和法准化联合会（FSA）分别早在20世纪90年代就已批准在本国实施该技术，并为此制定了相应的判别标准[1]。

　　目前发酵法检测食品中大肠群主要采用的是GB4789.3-20肠菌群测定，是用月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）配置的肉汤管放在温度为（36±1）摄氏度的恒温培养箱中培养（24±2）小时，先观察倒管内是否有气泡产生，然后（24±2）小时后进行产气酵试验，如果未产气则需要继续培养（48±2）小时，产气者进行酵试验。在酵试验中，用接种环从产气的LST肉汤管中各取取培养物1环，移到含有煌绿乳糖胆盐（BGLB）的肉汤管中，放在（36±1）℃恒温培养箱中培养（48±2）h，观察产气的情况。产气的就计为大肠菌群阳性管。由于该方法操作繁锁，耗费较大的物力财力人力，所以不太适应大量检测工作的需求[2]。