图象观察:当束流调到所需值后,终推进样品杆,用样品平移传动装置把样品座调到观察位置,即可进行图象观察。自噬体形成后,可与细胞内吞的吞噬泡、吞饮泡和内体融合(这种情况不是必然要发生的)。首先在透射电镜低倍下观察,选择感兴趣的视场,并将其移到荧屏中心,然后调节透射电镜中间镜电流确定放大倍数,调节透射电镜物镜电流使荧光屏上的图象聚焦至清晰。
武汉迈斯普生物科技有限公司是一家***从事生物医学技术服务、技术咨询及产品开发的生物技术服务企业。公司坐落于武汉光谷,由3位归国博士创办。冷固定:将样本放在液态的中速冻,这样水不会结晶,而形成非晶体的冰。公司长期致力于建立并完善多项基础生物技术服务平台。现凭借自身技术特色,依托光谷生物城技术产业优势,面向***提供生物技术服务。
扫描电镜使用步骤 一、开机(电源开关和准备开关均为打开状态)
1、开水(系统不报可);
2、开扫描电镜总电源;
3、电气柜后面开关打开,将自动/手动(AUTO/MAN)开关拔到自动(AUTO)的位置,此时电炉进行加热;
4、抽真空30分钟后,断开准备开关;
5、开扫描电镜系统软件;
6、打开主机前面面板上的电气柜开关,抽真空10分钟。
一、细胞取材流程及要求 取材流程:细胞直接刮下(不可胰酶消化,会造成细胞损伤),细胞悬
液离心,弃上清,PBS 洗 2 次(敏感的细胞直接固定,不洗,否则会造成
细胞器损伤),低速(1000-3000rpm)离心成团,加入组织及细胞电镜 2.5%固定 液 4℃过夜后快递。悬浮细胞、菌液可直接视为 细胞悬浮液操作。固体培养基培养的菌可直接将菌落挑到 PBS 中,后续 操作一致。
取材要求: 1、细胞数量充足(6cm 或 10cm 皿长满),离心后在 ep 管中绿豆大小; 2、缓冲液、固定液等 PH 值 7.3-7.4,4℃提前预冷;高速的电子的波长比可见光的波长短(波粒二象性),而显微镜的分辨率受其使用的波长的限制,因此电子显微镜的理论分辨率(约0。 3、贴壁细胞连着培养基用细胞刮斜着朝一个方向快速铲下,不要反复来回刮; 4、细胞悬液转入离心管,1000-3000rpm
离心成团,弃上清,加 PBS,将细胞转入 1.5ml 尖 头 ep 管,再次离心后弃上清。再加
PBS 重复上述步骤,后加
2.5%固定,4℃保存。 操作轻柔,尽量保证细胞不散开。(转速及时间请结合细胞情况,尽量低转速、短时间,以 细胞离心成团为准!(PBS 清洗时间过长,易造成细胞损伤);
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