将包被有的微球喷在膜上干燥之后，如何保证其被样本润湿后可以在膜上保持很好的流动性？

流动性差的原因可能是微球的粒径太大，或者是微球凝集在一起无法流动，亦或是由于样品中的液体太少导致不能使所有的微球被完全释放。

我们可以通过下面的方法来测试微球在膜上面的流动性：

1. 在膜上面点一些微球；

2. 在微球完全干燥之前加入一些水或缓冲液使微球在膜动；

3. 如果不能够流动，那么微球在这个膜上面存在物理上的运动障碍。

建议：对膜进行预处理可以有效的避免膜对的吸附；另外，也可以在膜上添加一些非常亲水的物质如蔗糖，可以快速的再水化使微球释放完全，核酸磁珠，海藻糖等低聚糖也可以起到很好的效果。

不规则的多分散磁性微球为什么也适合进行核酸提取呢？

原因是实验过程中磁性微球的量是处于过饱和状态，始终能够保证有足够的磁性微球对核酸进行吸附。

也就是说在每一个样本中加入的磁性微球是远远过量的，磁珠研发，即使添加磁性微球的量因多分散的原因而存在一定的差别，对于核酸提取的重复性也不会有明显的影响。

如今即使我们采用的微球是单分散的，也需要加入远远过量的磁性微球进行提取，磁珠，以此来适应大部分样本（个别样本核酸含量可能远远大于平均水平）。

荧光微球能够携带许多荧光分子，较弱的刺激就可以引发较强的信号，所以只需要少量的低能辐射就能产生荧光信号，避免了使用传统的性微球造成的辐射危险，并在不损失检测灵敏度的前提下降低了成本。已经产业化的荧光微球，使得高通量分析、筛选、固定化酶等领域的技术发展上了一个台阶，荧光微球作为应用于分析已是一个必然。荧光微球在生物样品检测中作为不同检测对象的固定化载体，不同荧光微球对应不同的捕获，识别不同的抗原，从而实现多种待测抗原定性及定量检测。我们期待着这一技术走向成熟和发展。

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